Для культивирования арибатид также рекомендуются сосуды с гипсовым слоем, значение которого заключается преимущественно в регуляции режима влажности внутри сосуда.
Величина сосудов определяется размерами и численностью животных в культурах. Для разведения орибатид большими группами — до 1000 экз. предлагаются стеклянные трубки диаметром 3—4 см, один конец которых залит слоем гипса толщиной 1,5—2 см. Другой конец трубки закрывается ватной пробкой. В стенке трубки оставляют отверстие, затянутое мельничным газом для аэрации, увлажнение гипса производится снизу (Ситникова, 1959). Клещей можно культивировать также в стеклянных бюксах диаметром 5 см, высотой 2 см со смесью гипса и угля на дне. Бюксы закрывают сверху либо целлофаном, либо несколькими слоями фильтровальной бумаги, и ежедневно увлажняют поверхность гипса (Bhattacharrya, 1962; Jalil, 1972). Пищей в таких культурах служат разлагающиеся растительные остатки (гнилая древесина, опад), кусочки коры, обросшие мхом, ломтики картофеля, грибы, развивающиеся на растительных остатках. Пищу следует менять не реже чем через 2—3 дня.
Метод индивидуального культивирования орибатид был разработан Майклом (Michael, 1884—1888), сконструировавшим маленькие стеклянные камеры размером 1,5—2X0,9 см, дном которых является предметное стекло. Позже появились различные модификации камеры Майкла — восковые камеры Шульца (размер 4X1,5 см) и гипсовые камеры Паули (2X2X1 см). Камеры с материалом закрывают покровными стеклами и помещают в эксикатор, в котором поддерживается 100%-ная влажность воздуха. Аэрация камер осуществляется либо через отверстия в стенках, либо путем ежедневного проветривания. В камеры помещают растительные остатки либо культуры грибов для питания клещей. Клещи хорошо растут и развиваются при кормлении плесневыми грибами Trichoderma viride и Rhizopus nigricans (Farahat, 1966). Для поддержания нужного уровня влажности на дно камер кладут кусочки влажной фильтровальной бумаги, которые меняют вместе с кормом через каждые 2 суток. Для культивирования отдельных групп клещей рекомендуют разные температуры — от 7 до 25°. Оптимальная температура определяется эмпирически, в соответствии с температурным режимом тех почв, откуда взят исходный материал.
Во многих случаях как популяции почвенных беспозвоночных одного вида, так и смешанные популяции разных видов в течение длительного времени можно содержать в вегетационных сосудах, засаженных растениями. В этом случае в сосуде должен быть обеспечен дренаж, полив должен производиться по весу не только через поверхность почвы, но и глубинный, через дренажные трубки, согнутые у нижней границы почвы под прямым углом. Оптимальная влажность почвы для содержания большинства почвенных беспозвоночных 50—60% от полной влагоемкости.
Для наблюдений над почвенными беспозвоночными, поведением более крупных почвенных беспозвоночных удобны рамки из двух параллельных стекол, устанавливаемых на расстоянии около 1 см друг от друга; узкие стенки и дно таких сосудов — рамок делаются из дерева. Такие рамки устанавливаются с небольшим наклоном (около 15°). Между стеклами засыпают почву, в, которую высаживают растения и выпускают испытуемых беспозвоночных. Корневые системы и положительные геотактичные. беспозвоночные обычно располагаются у нижнего стекла. Стекла затемняют на время между наблюдениями деревянными щитами или черной бумагой. Различные модификации этого метода описаны М. С. Гиляровым (1949).